小鼠作为优秀的实验动物模型，在临床前实验中发挥重要作用，被广泛应用于基础和转化医学研究。在基于小鼠的动物实验中，正确的小鼠注射方法，可以保证小鼠状态，获得可靠实验数据。本文介绍了几种常见的小鼠注射方法。

1、腹腔注射（Intraperitoneal Injections，IP）

小鼠腹腔注射的位置在腹中线两侧0.5cm处。

• 首先采用背侧保定法抓取小鼠，使其头部稍向后仰，腹部向上，小鼠左后肢用小指固定住。
• 再用75%酒精棉球消毒注射部位。
• 将注射器针头刺入皮肤，进入皮下后，沿皮下向前推进2-3mm，针头与皮肤呈45度角刺入小鼠腹腔。
• 回抽针栓，如无回血或液体即可注入药物。
• 注射完毕后，轻轻旋转针头，再缓慢拔出注射器，以免液体外漏。

2、尾静脉注射（Intravenous Injections，IV）

小鼠尾部背侧及两侧各有一根静脉，我们一般采用左右两侧的静脉（易于固定）。

• 将小鼠用专门的保定器保定（注意确保小鼠呼吸通畅），并将尾部拉直，绷紧。
• 小鼠尾部用酒精棉球反复擦拭或用45-50℃的温水浸泡30秒，从而使血管充盈扩张。
• 用左手拇指和食指固定住尾部靠近末端约1/3处，食指稍上提、拇指下压使尾部弯曲。
• 右手持注射器，沿与静脉平行方向，在左手拇指上方的转折处进针。（注意针尖斜面朝上）
• 针头刺入至少3mm后，轻推针栓，如无阻力或白色皮丘出现，即可注射药物。
• 拔出针头前，先用干棉球按压止血。如需反复注射，应从尾部末端开始，再逐渐向尾根方向移动。

3、肌肉注射（intramuscular injection，IM）

首先用脱毛膏将小鼠两后肢局部脱毛。

操作时一人保定小鼠，另一人用左手抓住小鼠的一条后肢，右手拿注射器。将注射器与腓肠肌内侧呈垂直角度迅速插入1/4。确定针头插入肌肉后（手指有针尖抵触感），再慢慢推动针栓，推动的速度应避免太快，以免损伤组织。

4、皮下注射（Subcutaneous Injections，SC）

操作时用左手拇指与食指轻轻捏起小鼠背部皮肤，右手持注射器，针头斜面朝上与皮肤呈30-45°角刺入，刺入后把针头轻轻左右摆动（易摆动说明已刺入皮下），再轻轻抽吸，若无回血，则可缓慢地推动针栓以将药物注入皮下。拔出针头后应用干棉球按压针刺部位，防止药物外漏。

5、皮内注射（Intradermal Injections，ID）

固定小鼠后，将注射部位毛发剃去并用75%酒精消毒，左手拇指和食指按住皮肤使之绷紧，在两指之间针头斜面朝上与皮肤呈大约30°角刺入，同时针头稍微上挑起并稍刺入，再推动针栓将药液注入皮内，最后缓慢抽出针头。注射后皮肤出现一白色小皮丘则表明注射成功。

除以上介绍的常用小鼠注射方法外，还有一些非常用小鼠注射方法，例如：鞘内注射、颞（面）静脉注射、门静脉注射、脑立体定位注射等。

注射法是最常见的给药方式之一，由于操作难度较大且容易引起感染等问题，因此需要专业人员进行操作，并采取相应安全措施。

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