动物行为学是研究动物对环境和其他生物的互动等问题的学科，研究的对象包括动物的沟通行为、情绪表达、社交行为、学习行为、繁殖行为等。动物行为学实验是动物整体生理和心理状态综合、全面和实时效应的反应，通过实验，科研人员可以评估动物的各项生理和心理状态，从而探索认知、情绪和运动等复杂的生命现象。

在许多研究中都会用到疾病动物模型，这些疾病动物模型常结合动物行为学实验来探索发病机制、药理药效等，因此动物行为学实验在生物医药领域具有不可替代的地位和作用。

动物行为学实验平台

百奥动物药理药效部动物行为学实验平台，可为客户提供多种动物行为学实验服务，有效支持发病机制研究、创新药物研发、药物安全和风险监测等。下边我们来了解一下百奥动物可以提供的部分动物行为学实验吧。

动物行为学实验平台可提供实验服务

01、抓痒行为实验

抓痒行为实验可以评估以瘙痒为主要症状的多种皮肤病模型，支持相关药物研究。

hIL-31诱发瘙痒的过程流程图

抓痒记录标准：老鼠抬起一条后腿朝向脸颊、背部和耳朵，在一秒或几秒钟内抓痒几次，然后放下那条腿。这一系列动作计为一次抓痒。

抓痒实验示意图^[1]

抗人IL31R抗体 (Nemolizumab) 在瘙痒症模型中的药效

(A)第1天小鼠抓痒数据统计；(B)第4天小鼠抓痒数据统计；(C)第10天小鼠抓痒数据统计；(D)不同天不同组小鼠抓痒频率增加的汇总。

小鼠伤口愈合模型中的抓痒实验

实验动物：C57BL/6，BALB/c，人源化小鼠，5-6周龄，雌性

建模方法：创伤

数据分析：抓痒记录，IHC，ELISA

(A)B-hIL31/hIL31RA/hOSMR小鼠在第0天接受等距1cm全层切口创伤。(B)抓痒记录。

MC903诱导的AD模型中的抓痒实验

实验动物：C57BL/ 6，8周，雌性

建模试剂：MC903

造模方法：小鼠右耳涂敷MC903

(A)耳朵厚度；(B)耳朵厚度变化；(C)抓痒记录。

02、旷场实验

旷场实验和其延伸实验可用于评价实验动物的运动能力、在新异环境中自主行为、焦虑程度和记忆学习能力等

实验前准备事项

• 实验尽量仅在上午或者仅在下午进行以减少昼夜节律影响
• 实验开展当天对动物进进行称重
• 试验开展前，动物需要提前一个小时挪至实验房间适应环境 （黑暗环境）
• 动物实验操作员尽量保持同一人。
• 实验在黑暗或弱光环境完成，实验房间需要保持安静。
• 实验前一天给小鼠画好尾巴标记，实验当天尽量不要保定小鼠查看耳号。
• 实验前调试软件设置不能用检测鼠，需要用分剩鼠。

实验操作过程

• 实验前用75%酒精对实验设备和操作人员的手进行彻底消毒，待酒精干透后进行实验。。
• 设置软件，16宫格，标记角落，四边，中心等区域设置。
• 实验开始前，测量并记录旷场底部亮度和噪音水平。
• 轻轻托起小鼠（可以用称体重用的小盒子做转移盒，尽量不要提着尾巴或者保定小鼠造成压力），小鼠头部背向操作人员，将小鼠放置于旷场中央，实验员离开房间。
• 录像10 min，软件统计总距离, 平均运动速度，在中心，四边，与四角时间，四边和中心区域的穿越次数，人工统计排泄次数（尿+粪便数）。
• 实验完成后，将小鼠放至新的笼盒，不要放回至还有未进行实验的小鼠的原鼠笼。酒精清理实验箱和转移盒，操作员双手酒精消毒, 等待酒精干透后进行下一组实验。

旷场实验

基于EAE模型进行旷场实验

实验动物：C57BL/6J，8-9w，雌性

EAE模型：MOG乳剂诱导轻度实验性自身免疫性脑脊髓炎模型

实验分组：

G1-PBS；

G2-CFA自制；

G3-commercial CFA

试验方案：10分钟自由探测(AT D21)

(A)体重；(B)临床评分；(C)总距离；(D)平均速度。

03、转棒实验

转棒测试用于评估啮齿动物的运动协调、平衡、疲劳程度等。

实验前准备事项

• 同一周内，若动物也需要进行旷场实验，转棒实验应在旷场实验开展后进行。
• 开展实验当天对动物进行称重。
• 动物实验操作员尽量保持同一人。
• 试验开展前，动物需要提前一个小时挪至实验房间适应环境。
• 若需进行多组试验，实验光照需要保持恒定。
• 正式实验前对动物训练，需要测试三种训练方式:

a.上午10rpm匀速训练5分钟；下午35rpm/min匀速训练5分钟；期间动物如果坠落，立即放回转棒即可，记录每只动物在训练期间坠落的次数。

b.实验前一天进行如下训练: 3*10rpm匀速训练5分钟，注意同一只动物每次训练间需要30分钟以上休息时间，期间动物如果坠落，立即放回转棒即可，记录每只动物在训练期间坠落的次数。

c.实验进行当天动物进行5分钟5rpm的匀速训练，期间动物如果坠落，立即放回转棒即可，记录每只动物在训练期间坠落的次数。

实验操作过程

• 实验前用75%酒精完全消毒实验仪器, 实验员消毒双手，待酒精干透后进行实验。
• 设置实验参数：目前有两种方式需要测试:

a:5rpm*1min→3rpm/min acc→40rpm*5min

b:5rpm*1min→8rpm/min acc→45rpm*1min

• 将小鼠放置于杆上，尽量采取不同组小鼠同时测试的方式放鼠(例:一次试验中，各组别分别取一只进行检测)。在接触不同笼子里的动物时，要消毒双手。当所有的动物都被正确地放置在杆上后，打开预设程序。
• 实验结束后，机器会自动统计小鼠从杆上掉落的潜伏期，掉落时速度，运动距离，人工根据录像统计小鼠掉落状态（坠落，跳跃或其他）。
• 每只小鼠重复实验三次，取平均值，注意每只鼠重复实验间隔至少30分钟，防止小鼠过度疲劳。
• 实验完成后，根据分组，将小鼠放至新的笼盒，不与未测试动物接触。用75%酒精小鼠实验仪器以及操作员双手, 等待酒精干透后进行下一组实验。

训练对转棒实验结果的影响

(A)在杆上运动总时间；(B)在杆上运动总距离。

基于轻度EAE模型的转棒实验

实验动物：C57BL/6J，8-9周，雌性

实验分组：

G1-PBS；

G2-CFA自制；

G3-commercial CFA

EAE模型：MOG乳剂诱导轻度实验性自身免疫性脑脊髓炎模型

训练方法：b.测试前一天：10rpm*5min*3 (D21)

测试方法：A.5rpm*1min→3rpm/min→40rpm*5min (AT D22)

(A)体重；(B)临床评分；(C)每轮训练中掉落次数；(D)掉落潜伏时间；(E)掉落时速度；(F)总行进距离。

对麻醉动物进行转棒实验

实验动物：C57BL/6J, 7-8周，雌性

实验分组：

G1-15mg/kg Zoletil®50+1.5mg/kg Xylazine hydrochloride;

G2-7.5mg/kg Zoletil®50+0.75mg/kg Xylazine hydrochloride;

G3-3.75mg/kg Zoletil®50 +0.375mg/kg Xylazine hydrochloride;

G4-control;

训练方法：b.测试前一天：10rpm*5min*3

测试方法：A.5rpm*1min→3rpm/min acc→40rpm*5min  

(A)每轮训练中掉落次数；(B)掉落潜伏时间；(C)掉落时速度；(D)总行进距离。

参考资料：

[1].J Vis Exp. 2019 Sep 27;(151). doi: 10.3791/58943.