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实验操作-小鼠安乐死方法
来源:BioMice百奥动物 时间:2023-10-13

实验小鼠作为科学研究的重要工具,在推动医学和生物学领域的发展中发挥着重要作用。实验小鼠作为有生命的个体,同样享有生存的权利。因此,在确定已经得到实验结果或实验结束,或经兽医评判动物痛苦程度达到或超过预设人道终点,或者因为其他一些原因不适合继续饲养时,我们需要及时进行小鼠安乐死,安乐死过程中应尽量减少动物的痛苦和压力,遵循相关的伦理规范和法律法规,确保人道性和科学性。

常见的小鼠安乐死方法

常见的小鼠安乐死方法主要有注射药物、吸入性药物以及物理方法。

注射药物

常用注射药物包括巴比妥类,氯化钾等,这些药物会使小鼠进入无痛苦和无意识的状态继而呼吸停止。一般小鼠选择腹腔注射或静脉注射的方式给药。

吸入性药物

常见的吸入性药物如CO2、氟烷、异氟烷等卤代麻醉剂,小鼠对于CO、N2O有明显的厌恶感所以一般不常使用,小鼠吸入40%CO2时很快就会达到麻醉效果,所以CO2是啮齿类动物最常见的吸入性药物,一般操作时会将小鼠置于密闭的容器中,通过向容器中注入CO2等气体,使其逐渐窒息而死。注意不可直接将有意识的小鼠放置于100%CO2,会引起小鼠的不适与痛苦,应当逐渐增加CO2浓度,直到出现呼吸心跳暂停。但是对于新生的小鼠,因为对缺氧的耐受性非常高,所以必须需要长时间操作才可以保证死亡,对于新生小鼠CO2需要处理50min以上才可以确保死亡。且使用CO2方法时,需要确保封闭的安乐死装置可清晰观察,容器内不可装入过多小鼠造成拥挤,且不可放入不同品种的小鼠,以免造成死亡前的窘迫。



物理方法

一般物理方法实施前可给予镇静剂,以减少动物应激。因实验所需采集动物全身血液或放血,需先麻醉后再实施。

1、颈椎脱臼

颈椎脱臼是一种快速而无痛苦的小鼠安乐死方法。一般用手或工具将小鼠的颈椎迅速扭曲,导致脊髓损伤,从而使小鼠立即失去意识并停止呼吸,此方法只适用于体重<200g的啮齿类动物。

2、颅脑损伤

颅脑损伤是一种快速而无痛苦的小鼠安乐死方法。会使用特定的工具或方法对小鼠的头部进行打击或损伤,导致脑部受损,从而使小鼠立即失去意识并停止呼吸。

3、断头法

使用断头台或剪刀快速切断延髓,使头颅与身体迅速分离,动物会在5-30S丧失意识死亡。

不管采用何中安乐死方法,最后都必须确认动物是否已经死亡,操作人员也需要了解安乐死相关法规、法规和标准,熟悉实施安乐死的目的与意义,接受培训并掌握正确的安乐死技术,熟悉的疼痛或痛苦体征,必要时也需要对安乐死操作人员提供心理健康及职业健康培训。

最后,我们需要认识到小鼠安乐死在科学研究中的重要性。小鼠安乐死是科学研究中的必要手段,旨在减少小鼠的痛苦和折磨,并确保实验结果的准确性和可靠性。在实际工作中遵守伦理规范,选择合适的方法来结束小鼠的生命还需兽医结合现实情况从专业角度做出判断。通过对小鼠的研究,我们能够更好地了解人类疾病的发生机制,为人类的健康和福祉做出更大的贡献,所以我们需要对实验动物尊重、善待。

感谢大家的阅读!如果您对这个话题有任何想法或意见,可以联系我们进行探讨。

参考文献:

[1] GB∕T 39760-2021 实验动物 安乐死指南

[2] 2020版美国兽医协会动物安乐死指南解析

[3] 实验动物饲养管理和使用指南